(044) 237-02-86

Контактный центр

Пн-пт: с 8:15 по 16:30

ул. Багговутовская, 1

г. Киев

Соц. сети

 

Бактериологическая лаборатория

КОКБ  >  Лаборатория   >  Центральная лаборатория  >  Бактериологическая лаборатория

Наше назначение:

Обеспечить здоровье нации, эффективно бороться с возбудителями инфекций, ускорить лечебный процесс.

Учитывая актуальность проблемы, а именно, устойчивость микроорганизмов к антимикробным и химиотерапевтическим препаратам, работа многопрофильной больницы хирургического профиля невозможна без помощи бактериологического отдела. Сейчас, бактериологический отдел активно принимает участие в дифференциации и верификации поставленного предыдущего диагноза и помогает клиницисту в правильном выборе тактики лечения антибиотиками, а также принимает участие в инфекционном контроле и мониторинге внутренне — больничной инфекции.

Бактериологический отдел контролирует санитарно-эпидемиологический режим внутренней среды больницы, контролирует стерильность перевязочного материала и хирургического инструментария. Осуществляет бактериологические исследования гнойно-воспалительных заболеваний разных видов биологического материала от больных стационара и КЦ. Находит и идентифицирует возбудители с определением чувствительности к антибактериальным препаратам.

С января 2018 года бактериологическим отделом заведует бактериолог высшей квалификационной категории Поточилова Виктория Владимировна.

В штате бактериологической лаборатории сейчас работают:

  • 1 врач-бактериолог
  • 1-бактериолог
  • 4-лаборанта
  • 2 младшие медицинские сестры.

Каждые 5 лет специалисты повышают свою квалификацию в заведениях последипломного образования. Сотрудники активно участвуют в научно — практических конференциях как украинских, так и с участием международных специалистов. Сейчас, бактериологическое отделение принимает участие в многоцентровом исследовании по оценке распространения стойких к антибиотикам «приоритетных патогенов» — бактерий, которые представляют угрозу для здоровья человека. Врачи бактериологического отдела сотрудничают с кафедрой «Микробиологии, эпидемиологии и инфекционного контроля» НМАПО имени Л.П. Шупика. Их научные труды печатают в периодических медицинских журналах.

Бактериологический отдел ЦКДЛ имеет разрешение областной режимной комиссии на право работы с возбудителями 3-4 групп патогенности.

Регулярно проводится внешний контроль качества бактериологических исследований, выполняются контрольные задачи. Ежедневно проводится внутренне-лабораторный контроль качества.

Бактериологический отдел имеет необходимое количество помещений, оборудование, также оснащен бактериологическим анализатором Vitek-2 compact и средствами измерительной техники и вспомогательным оборудованием, питательными средами и химреактивами, разрешенными для применения на территории Украины.

Работа бактериологического отдела осуществляется по таким направлениям:

  1. Выявление возбудителей гнойно — воспалительных заболеваний бактериальной природы и грибов рода Candida и Aspergillus, определение их чувствительности к антибактериальным и химиотерапевтическим препаратам.
  2. Диагностика инфекционных болезней (острые кишечные инфекции, гастроэнтероколиты, сальмонеллезы, дизентерия, менингококковая инфекция).
  3. Диагностика дисбактериоза кишечника.
  4. Выявление носителя MRSA.
  5. Проведение микробиологического мониторинга в лечебных отделениях больницы, выявление антибиотикорезистентных штаммов микроорганизмов с целью профилактики внутренне — больничных инфекций.
  6. Проведение профилактических исследований во время медицинских осмотров декретированных групп населения на переносимость кишечных инфекций, выявление патогенного стафилококка носа.

ПЕРЕЧЕНЬ ИССЛЕДОВАНИЙ

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА, ВЗЯТИЕ И ДОСТАВКА БИОМАТЕРИАЛА

  • собирать материал до начала антибактериальной терапии или, когда содержимое введенного в организм препарата становится минимальным (обычно, перед введением следующей дозы антибиотика);
  • собирать материал непосредственно из очага инфекции или исследовать биопробы, которые отображают воспалительный процесс в тех или иных органах (например, бронхиальный секрет при пневмониях, мочу при урологических инфекциях);
  • придерживаться асептики с предотвращением контаминации проб посторонней флорой;
  • использовать стерильные ватные тампоны (для взятия выделений из ран, мазков со слизистых оболочек, глаз, ушей, носа, зева, цервикального канала, влагалища), которые сразу же необходимо погружать в транспортные среды (при невозможности немедленной доставки!); шприцы (для крови, гноя, эксудатов), контейнеры или лабораторная посуда (для сбора мокрот, мочи, фекалий);
  • для выделения анаэробов перед пункцией со шприца предварительно удалить воздух, а после пункции, сразу же закрыть иглу колпачком; рекомендовано использовать специальные транспортные среды!
  • количество материала должно быть достаточным для проведения исследований;
  • транспортировать нативный материал в лабораторию необходимо в максимально короткий срок (для большинства образцов не более 1,5-2 часов, ликвор, материал из ран и кровь доставлять немедленно!!!). Когда образцы невозможно доставить в лабораторию своевременно, допускается их хранение в холодильнике при +40 С, не больше 6 часов (кроме ликвора, крови, выделений из ран). Применение транспортных сред увеличивает сроки хранения материала до 24-48 часов;
  • материал для микробиологических исследований транспортируется в специальных боксах, пеналах, шприцах (кончик закрывается стерильной пробкой), для обеспечения требований санэпидрежима, в частности, инфицирование окружающей среды;
  • материал, который направляется в лабораторию, должен иметь сопроводительный бланк, в котором указывают характер материала, дату и время его собирания; ФИО, пол, возраст больного, диагноз (обязательно указать на проведение антимикробной терапии!).

Особенности сбора биоматериала для бактериологического посева:

ПРИ ИНФЕКЦИЯХ КОЖИ И ПРИЛЕГАЮЩИХ ТКАНЕЙ

В большинстве случаев исследуют пораженные ткани и аспираты, которые получают «игло-шприцевым методом», что намного лучше при использовании тампонов. При этом необходимо придерживаться общих правил:

  • забор материала делает врач во время операции или перевязки, с соблюдением правил асептики;
  • кожу вокруг раны обрабатывают тампоном, смоченным 70° спиртом или другим антисептиком;
  • стерильной марлевой салфеткой удаляют детрит, некротические массы, гной;
  • материал берут бактериологическим тампоном вращательными движениями от центра к периферии пораженного участка в течение 3-5 секунд, не затрагивая ткани вокруг раны, кожи, слизистых и др.;
  • для исследования в аэробных и анаэробных условиях по показателям целесообразно использовать два тампона;
  • при использовании бактериологического тампона следует сделать мазок на стекле для бактериоскопического исследование;
  • при взятии кусочков ткани (величиной с горошину) используют стерильную посуду, которая плотно закрывают;
  • образцы нужно доставлять в лабораторию без промедления, а в сопроводительном бланке обязательно указать время взятия материала.

Аспираты поверхностных ран.

После дезинфекции поверхности раны и высыхании дезинфектанта, врач, с помощью шприца объемом 3-5 мл и иглы №22 или №23, берет аспират из глубины раны; если есть везикула — и жидкость, а также клетки со дна дефекта.

Глубокие раны или абсцессы.

Дезинфицируют поверхность 70% спиртом, а затем йодным раствором (1-2% настойка йода). Материал берут из глубины, избегая его контаминации поверхностной микрофлорой раны. При взятии материала во время операции на посев отправляют и часть стенки абсцесса.

ИССЛЕДОВАНИЕ МАТЕРИАЛОВ ПРИ АУТОПСИИ

Кровь для исследования до разреза может быть получена шприцем с длинной пункционной иглой, после прижигания раскаленным шпателем кожи в месте прокола. Также кровь может быть получена до разреза при пункции больших сосудов. В процессе разреза, кровь из левого желудочка с соблюдением стерильности в количестве 10-20 мл, может быть взята пастеровской пипеткой или шприцем и сразу посеяна в питательные среды.

Как биопсионный материал, целесообразно брать кусочки 0,5-1 см. куб., для транспортировки которых используют пробирки или другие стерильные емкости, которые плотно закрываются крышкой. Параллельно готовят мазки-отражения для микроскопического исследования. Перед взятием биоптатов исследуемый участок необходимо обработать 3-% перекисью водорода, потом удалить остатки дезинфектанта стерильным физиологическим раствором.

Материал для исследования забирает патологоанатом стерильным инструментарием с соблюдением правил асептики.

Срок доставки в лабораторию — не более 2-х часов.

БИОМАТЕРИАЛ ИЗ ГЛАЗ

Материал с конъюнктивы (при бактериальном конъюнктивите) собирают с края века.

Образцы берут стерильным, предварительно увлажненным ватным или пропитанным альгинатом кальция тампоном.

Кончиком тампона, вращательными движениями по всей конъюнктиве, собирают материал с применением любых анестетиков. Для каждого глаза используют отдельный тампон.

Материал сразу высевают в питательные среды и немедленно доставляют в лабораторию.

БИОМАТЕРИАЛ С УШЕЙ

При воспалениях внешнего уха, кожу обрабатывают 70% спиртом и промывают физиологическим раствором. Материал с очага берут стерильным ватным тампоном. Материал со среднего уха доставляют в лабораторию в шприце после тимпанопункции или тимпаноцентеза.

ЖИДКОСТИ ИЗ СТЕРИЛЬНЫХ ПУСТОТ

Исследуют суставную (синовиальную), плевральную, перитонеальную (асцитическую) и перикардиальную жидкости, придерживаясь таких правил:

Обрабатывают кожу в области пункции 70% спиртом и потом дезинфицируют йодным раствором (1-2% йодной настойки или 10% раствор провидон-йодина). Если используют настойку йода, то после завершения процедуры взятия материала ее удаляют 70% спиртом, во избежание ожога кожи.

Через кожу пункцию и аспирацию жидкости осуществляет врач с соблюдением правил асептики.

Удаляют пузырьки воздуха, которые попали в шприц, и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют ее на исследование в шприце, предварительно нужно снять (или загнуть) иглу и одеть на канюлю шприца защитный стерильный колпачок. Остаток жидкости или гной транспортируют в стерильных контейнерах с крышкой, которая завинчивается. При большом количестве жидкости (например, асцитической) можно делать посев непосредственно во флаконы со средой для гемокультур (в объемном соотношении 1:10).

Взятие материала тампонами наименее удачный способ, поскольку не исключает влияния кислорода воздуха на анаэробы.

Необходимый минимальный объем жидкости зависит от характера исследования:

  • для выделения аэробных бактерий нужно 1-5 мл;
  • для выделения анаэробов берут 1-5 мл и используют анаэробную транспортную систему;
  • для исследования на грибы (Hіstoplasma capsulata при Вол-Инфекции; Cryptococcus spp., Candіda spp.) необходимо >10 мл; для выделения микобактерий нужно >10 мл.

КРОВЬ

Для посева кровь нужно брать с соблюдением правил асептики и средств индивидуальной защиты.

Нельзя брать кровь из внутрисосудистых катетеров, за исключением случаев, когда ее получение из вены затруднено или есть сепсис катетерного происхождения.

В большинстве случаев острого течения сепсиса достаточно исследовать 2-3 образца крови, которые взяты отдельными венепункциями с интервалом в 30 минут.

При неостром эндокардите кровь исследуется в первый день три раза, с интервалом 15-20 минут, а при отрицательных результатах — через 24 часа проводят еще 3 посева.

Если в предыдущие 1-2 недели больному была проведена антимикробная терапия, кровь исследуют по 2 раза на протяжении 3-х дней.

При лихорадке неясного происхождения кровь исследуют 2 раза в течение 1 часа, а при отрицательных результатах — по той же схеме через 24 и 36 часов (обычно, увеличение числа посевов более 4-х, существенным образом не влияет на результативность анализа).

Для взрослого нужно от 10 до 30 мл крови на каждую венопункцию, детям — 1-5 мл крови.

При взятии крови необходимо использовать стерильные шприцы или системы для одноразового пользования.

Кожу над веной тщательно обрабатывают 70% этиловым спиртом, потом 1-2% настойкой йода 30 сек (начинают обработку кожи от центра будущего прокола в направлении к периферии). Дают высохнуть обработанному участку кожи, потом делают венопункцию, после чего снова обрабатывают участок 70% спиртом для удаления излишка йода, во избежание раздражения кожи, которая возникает у некоторых пациентов.

Посев осуществляют во флаконы с питательными средами аэробного и анаэробного культивирования.

Рекомендуется соотношение крови и среды 1:10.

ЛИКВОР

Ликвор необходимо исследовать до начала антибактериальной терапии, забор материала проводит врач.

Ликвор набирают в стерильные пробирки, которые герметически закрываются.

Для исследования используют 3 пробирки:

  • для микробиологического, клинического и биохимического анализов.

Для микробиологического анализа присылают другую пробирку (желательно центрифужную) или пробирку с самым мутным содержимым в количестве 1-2 мл. Ликвор незамедлительно доставляют в лабораторию, и пока он еще теплый, его подвергают анализу. При отсутствии такой возможности, материал сохраняют при 37°С в течение нескольких часов, а для его пересылки используют изотермальные ящики, грелки, термос или любую другую упаковку, где поддерживается температура приблизительно 37°. Охлаждение ликвора ниже 35°С ведет к потере жизнедеятельности менингококков!

БИОМАТЕРАИЛЫ ПРИ ИНФЕКЦИЯХ ВЕРХНИХ ДЫХАТЕЛЬНЫХ ПУТЕЙ

Для получения мазков из зева, необходимо аккуратно, прижимая язык шпателем, ввести стерильный тампон между миндалинами и язычком (нельзя затрагивать тампоном губы, щеки, языка и язычок).

Двигая тампоном вперед-назад собирают материал с задней стенки глотки, миндалин и участков воспаления или язв слизистой оболочки ротовой полости, и доставляют его в лабораторию, используя при необходимости транспортную среду.

Мазки из носа исследуют, прежде всего, для выявления носителя стафилококка:

  • вводят стерильный тампон в носовой ход до упора на уровне носовой раковины (расстояние, приблизительно 2,5 см);
  • вращательными движениями тампоном собирают материал со слизистой оболочки носа;
  • повторяют процедуру в другом носовом ходу.

При диагностике дифтерии материалы (слизь и пленки с миндалин и из носа) берут отдельными тампонами натощак, или не раньше, чем через 2 часа после употребления пищи; при наличии налетов, материал следует брать с участков разграничения пораженных и здоровых тканей легким нажимом тампона. При дифтерии редчайших локализаций (глаза, уши, раны, кожа, влагалище) дополнительно исследуют материалы из пораженных участков.

Мазки из носоглотки исследуют, прежде всего, для выявления носителя N.menіngіtіdіs и диагностики коклюша. Аккуратно, через нос к задней стенке глотки вводят выгнутый проволочный тампон с пропитанным альгинатом кальция ватным (или из дакрона) наконечником и вращательными движениями собирают материал, потом транспортируют его в лабораторию.

Аспират из носовых пазух берется при пункции и доставляется непосредственно в шприце.

БИОМАТЕРИАЛЫ ПРИ ИНФЕКЦИЯХ НИЖНИХ ДЫХАТЕЛЬНЫХ ПУТЕЙ

Мокроты — материал собирается натощак утром, во время приступа кашля, в стерильную банку с бусами, после того, как больные чистят зубы и промывают ротовую полость кипяченой водой. Если мокроты отходит плохо, с вечера пациенту назначают муколитики. Сроки доставки материала в лабораторию не должны превышать 1,5-2 часа с момента его получения (допускается хранение в холодильнике не более 6 часов).

МОЧА

Микробиологическое исследование мочи нужно проводить до начала антибактериальной терапии.

Необходимо провести тщательный туалет внешних половых органов (мытье с мылом или мягким детергентом).

Собирают среднюю порцию выпущенной мочи (первую порцию спускают) в количестве 3-5 мл в стерильную посуду и используют ее для культуральной диагностики и количественной оценки осеменения мочи.

Взятие мочи с помощью катетера связано с риском инфицирования мочевых путей, поэтому его желательно использовать только в случае, если больной неспособен мочиться самостоятельно, а также для размежевания воспалительного процесса в почках и мочевом пузыре. С этой целью мочевой пузырь опорожняют катетером и промывают раствором антибиотика (50мл раствора, который содержит 40мг неомицина и 20мг полимиксина), после чего с интервалом в 10 минут берут пробы мочи для исследования. Если инфекция локализуется в почках, микроорганизмы содержатся во всех порциях мочи (бактериурия); при инфекции мочевого пузыря (цистит), моча остается стерильной.

Для получения мочи можно использовать метод надлобковой пункции. При этом устраняется контаминация мочи микрофлорой из нижних отделов мочевого тракта и влагалища, облегчается определение инфекции нижних отделов уринарного тракта. Однако, существует опасность инфицирования больного и поэтому, к надлобковой пункции мочевого пузыря прибегают только в случаях необходимости.

Мочу следует доставлять в лабораторию как можно быстрее после ее получения от больного, во избежание размножения микроорганизмов, которые там находятся. Размножение микробов в моче до начала анализа, приводит к ошибочным результатам при количественной оценке степени бактериурии и может дезориентировать относительно возбудителя заболевания.

Если немедленный посев мочи невозможен, то ее следует хранить в холодильнике не более чем 18 часов.

БИОМАТЕРИАЛЫ ПРИ ИНФЕКЦИЯХ ЖЕНСКИХ ПОЛОВЫХ ОРГАНОВ

Влагалище — материал для исследования следует брать до мануального исследования, после введения зеркала и подъемника из заднего свода или из патологически измененных участков слизистой оболочки.

В зависимости от цели исследования — полуколичественной или количественной оценки микрофлоры влагалища — используют два метода:

  • вагинальные выделения собирают ватным тампоном,
  • вагинальные выделения собирают калиброванной петлей (диаметр 3 мм).

Шейка матки — материал для исследования берут после оголения шейки матки в зеркалах, тщательно обрабатывают влагалищную часть тампоном, который смочен изотоническим раствором хлорида натрия, после чего тонкий ватный тампон осторожно вводят в цервикальный канал, не затрагивая стенок влагалища, во избежание контаминации влагалищной микрофлорой.

Матка — для взятия материала из полости матки, во избежание загрязнения влагалищной микрофлорой, используют специальные инструменты типа шприца-аспиратора, который имеет на зонде внешнее покрытие. После прохождения зондом цервикального канала в полость матки, раскрывают внешнюю оболочку зонда и аспирируют содержимое полости матки в шприц. Потом внешнюю оболочку закрывают и выводят зонд из полости матки.

Взятый материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 2-х часов. Если это требование выполнить невозможно, тампоны следует поместить в транспортную среду (12 часов хранения в холодильнике).

КАЛ НА ДИСБАКТЕРИОЗ

За 1-3 суток до взятия пробы, больные должны находиться на диете и исключить продукты питания, которые усиливают брожение в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные препараты. С момента последнего принятия пищи до взятия материала должно пройти не меньше 8-10 часов.

В лабораторию доставляется свежевыделенный кал в теплом виде, не позже чем через 2 часа с момента собирания материала. Собранный в стерильную стеклянную или пластиковую, желательно прозрачную посуду, с нескольких участков в количестве 10-15 грамм.